Detalhes bibliográficos
Ano de defesa: |
2007 |
Autor(a) principal: |
Oliveira, Rodrigo Vasconcelos de |
Orientador(a): |
Não Informado pela instituição |
Banca de defesa: |
Não Informado pela instituição |
Tipo de documento: |
Dissertação
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Tipo de acesso: |
Acesso aberto |
Idioma: |
por |
Instituição de defesa: |
Universidade Estadual do Ceará
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Programa de Pós-Graduação: |
Não Informado pela instituição
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Departamento: |
Não Informado pela instituição
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País: |
Não Informado pela instituição
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Palavras-chave em Português: |
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Link de acesso: |
https://siduece.uece.br/siduece/trabalhoAcademicoPublico.jsf?id=46206
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Resumo: |
<div style=""><font face="Arial, Verdana"><span style="font-size: 13.3333px;">O trabalho teve como objetivos: avaliar in vitro o sêmen caprino congelado nos </span></font><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">meios diluentes à base de água de coco em pó (ACP-101) e TRIS (hidroxi-metil </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">amino metano); analisar o efeito de soluções para re-diluição seminal pósdescongelação </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">por meio de parâmetros cinéticos mensurados pelo sistema Sperm </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">Class Analyser® e; comparar a eficiência do corante azul de bromofenol (AB) com o </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">corante clássico de eosina- igrosina (EN) na avaliação morfológica do sêmen </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">caprino fresco e descongelado submetidos ao teste de termo-resistência. Foram </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">utilizados quatro bodes. Os diluentes empregados foram: ACP-101 (+ 2,5% gema </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">ovo + 7% glicerol) e TRIS (+ 20% gema ovo + 6,8% glicerol). Os ejaculados foram </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">coletados por vagina artificial, avaliados quanto a: volume, concentração, motilidade </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">massal, porcentagem de espermatozóides móveis, motilidade individual progressiva, </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">porcentagem de vivos e mortos e, alterações morfológicas. Em seguida, divididos </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">em duas alíquotas, diluídas nos tratamentos experimentais ACP-101 e TRIS. As </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">amostras foram refrigeradas até 4ºC, envasadas em palhetas, congeladas em </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">vapores de nitrogênio, armazenadas em botijão criogênico (-196ºC) e </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">descongeladas após 30 dias. As avaliações de motilidade espermática auxiliada por </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">computador foram realizadas aos 5, 60 e 120 minutos pós-descongelação. Para rediluição </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">pós-descongelação foram utilizados diluente base (DB: ACP-101 ou TRIS </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">sem gema e sem glicerol), soluções de Ringer Lactato (RL) e de NaCl a 0,9% (SF). </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">Três palhetas de cada tratamento por ejaculado avaliadas e re-diluídas, com uma </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">das três soluções de re-diluição. Os parâmetros de motilidade espermática auxiliada </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">por computador analisados foram: motilidades total (MT) (%) e progressiva (MP) (%), </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">velocidades média do trajeto do espermatozóide (VAP) (μm/s) e linear (VSL) (μm/s), </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">e população de espermatozóides rápidos (ER) (%). A morfologia espermática foi </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">avaliada, aos 5 e 120 minutos pós-descongelação, por meio de esfregaços corados </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">por EN e AB. Os parâmetros morfológicos avaliados foram: espermatozóides </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">normais (N), alterações de cabeça (AC), de peça intermediária (API), e de flagelo </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">(AF), gotas citoplasmáticas proximal (GCP), e distal (GCD), e cabeça destacada </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">(CD). Os dados foram submetidos à ANOVA e aos teste de Duncan e Tukey (P < </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">0,05). Independentemente da variável cinética, o tratamento ACP x RL apresentouse </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">significativamente inferior durante o teste de termo-resistência. O diluente à base </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">de TRIS apresentou resultados cinéticos significativamente superiores ao ACP-101, </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">aos 60 e 120 minutos. Os espermatozóides diluídos e congelados no TRIS não </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">sofreram influência das soluções de re-diluição pós-descongelação. Não existiu </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">diferença significativa na observação de N entre tratamentos após 5 minutos do </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">teste de termo-resistência. Após 120 minutos a quantificação de N foi influenciada </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">significativamente pelo diluente, tendo o TRIS apresentado resultados superiores. O </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">período de incubação de 120 minutos a 37oC promoveu o aumento das AC. Os </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">parâmetros cinéticos, após 5 minutos de incubação a 37oC, dos espermatozóides </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">diluídos e congelados em meio à base de ACP-101 demonstram sua potencialidade </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">na criopreservação seminal de bodes. O meio diluente à base de TRIS promoveu </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">uma maior proteção quanto às crioinjúrias em espermatozóides caprinos </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">congelados. O corante azul de bromofenol demonstrou ser eficiente na avaliação do </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">sêmen caprino fresco e pós-descongelação. </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">Palavras-chave: caprinos; espermatozóides; água de coco em pó; TRIS; eosinanigrosina; </span><span style="font-size: 13.3333px; font-family: Arial, Verdana;">azul de bromofenol.</span></div> |